溶解性无机碳(DIC)的碳同位素组成(δ¹³C)是研究水体碳循环过程的重要指标,其测定结果的准确性高度依赖于样品前处理流程的规范性。本文档详细规定了水样采集、DIC提取、纯化及同位素质谱分析前的标准化操作步骤,重点控制酸化条件、气体纯化和记忆效应等关键环节,确保δ¹³C测定精度优于±0.2‰(相对于VPDB标准)。本方法适用于淡水、海水及地下水等环境样品的碳同位素地球化学研究。
1. 适用范围
本流程适用于天然水体(包括海水、淡水、地下水等)中溶解性无机碳(DIC)的δ¹³C分析样品制备,涵盖以下步骤:
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样品采集与保存
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无机碳提取
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纯化与转化(CO₂制备)
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同位素质谱(IRMS)进样前处理
2. 实验原理
通过酸化释放水样中的DIC(包括CO₂、HCO₃⁻、CO₃²⁻),经高纯氦气载带通过冷冻纯化系统,最终转化为CO₂气体供同位素比值质谱(IRMS)分析。
3. 仪器与试剂
3.1 主要仪器
设备名称 |
规格要求 |
真空提取线 |
耐压<10⁻³ Pa,含液氮冷阱 |
气体质谱仪 |
分辨率>100(如Delta V Advantage) |
微量注射器 |
50-100 μL(精度±0.1 μL) |
水浴锅 |
控温精度±0.1°C |
3.2 关键试剂
试剂 |
纯度要求 |
磷酸(H₃PO₄) |
85%,δ¹³C本底已知 |
高纯氦气 |
>99.999% |
液氮 |
工业级 |
无水乙醇 |
色谱纯 |
4. 操作流程
4.1 样品采集
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采样容器:
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使用棕色玻璃瓶(预先用10% HCl浸泡24小时)
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避免气泡,满瓶采样(顶空<2%)
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现场处理:
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立即过滤(0.45 μm GF/F滤膜)
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添加饱和HgCl₂溶液(终浓度20 mg/L)抑制微生物活动
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4.2 实验室预处理
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样品转移:
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在惰性气体保护下分装至20 mL顶空瓶
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记录pH、温度等参数
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酸化释放:
4.3 CO₂纯化
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冷冻分离:
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通过-80°C乙醇冷阱去除水汽
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液氮冷冻(-196°C)捕获CO₂
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纯化循环:
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重复冷冻-抽气3次
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最终收集于5 mL样品管
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4.4 质谱分析准备
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压力校准:
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使用标准CO₂(δ¹³C=-3.5‰ vs. VPDB)校准
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进样压力控制在0.8-1.2 bar
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空白校正:
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每批次运行2个实验室空白(超纯水+同批试剂)
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5. 关键控制点
5.1 误差来源控制
误差类型 |
控制措施 |
同位素分馏 |
酸化温度严格控制在40±0.5°C |
交叉污染 |
样品间隔用高纯氦气冲洗3分钟 |
记忆效应 |
每5个样品插入标准品监控 |
5.2 数据质量控制
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精密度:平行样δ¹³C差值≤0.2‰
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准确度:NBS-19标准物质回收率98-102%
6. 注意事项
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采样阶段:
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避免使用橡胶/塑料部件接触样品
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河口样品需记录盐度梯度
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实验操作:
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磷酸注入速度需恒定(0.1 mL/min)
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液氮纯化时防止O₂冷凝(保持系统真空)
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长期储存:
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酸化后样品可-20°C保存14天
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未处理样品需24小时内分析
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7. 故障排除
问题现象 |
可能原因 |
解决方案 |
质谱信号不稳 |
水汽残留 |
延长冷冻时间至45min |
δ¹³C值偏正 |
酸化不完全 |
检查磷酸新鲜度 |
峰形拖尾 |
系统泄漏 |
氦质谱检漏 |
8. 参考文献
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USGS TWRI 5-A9 (2018)
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Marine Chemistry 115(1): 110-123
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ISO 5667-3:2018水质采样标准
注:本流程适用于δ¹³C分析,若需¹⁴C测年需改用真空封管法提取DIC。